在神經科學、藥理學和生理學研究中，大小鼠微透析技術是一種重要的活體取樣方法，能夠實時獲取細胞外液中的小分子物質（如神經遞質、代謝產物等）。而大小鼠微透析探針作為該技術的核心工具，其正確使用直接關系到實驗數據的質量和動物福利。以下是詳細的操作指南與注意事項：

　　一、大小鼠微透析探針實驗前準備與檢查

　　1. 系統完整性驗證

　　開箱后首先確認包裝內的組件是否齊全：包括探針本體、連接管路、灌流液容器、恒流泵及固定裝置等。特別要檢查探針膜區的通透性——輕輕吹氣測試是否有均勻氣流排出，確保無堵塞或破損。若發現膜表面有劃痕或裂紋，應立即更換新探針以避免樣本污染。

　　2. 灌流液配制與脫氣處理

　　根據實驗目的選擇合適的人工腦脊液（aCSF）配方，并加入必需的添加劑（如K通道阻滯劑）。配制完成后需進行超聲波脫氣至少15分鐘，去除溶解氧以外的氣體氣泡。未充分脫氣的灌流液可能導致流量不穩定甚至斷流，嚴重影響回收率。建議使用在線過濾器進一步凈化液體，防止微粒阻塞微孔道。

　　3. 參數預校準

　　將恒流泵設置為低流速模式（通常為1-5μL/min），觀察實際輸出是否符合理論值?？赏ㄟ^稱重法驗證單位時間內收集到的液體重量來校正泵速誤差。同時調整壓力傳感器閾值報警功能，以便及時察覺管路異常情況。

　　二、大小鼠微透析探針植入手術關鍵技巧

　　1.麻醉深度把控

　　采用腹腔注射戊巴比*鈉的方式維持麻醉狀態，期間持續監測角膜反射和腳趾夾捏反應以確保鎮痛效果適度。過深抑制自主呼吸會干擾生理指標；過淺則引發應激反應導致皮質醇升高，兩者均會影響目標區域的代謝水平。推薦配合體溫控制系統保持直腸溫度在37±0.5℃范圍內。

　　2.立體定位精度控制

　　利用腦立體定位儀時，務必反復核對Bregma點作為原點的坐標體系。對于紋狀體靶向實驗，典型坐標約為AP+0.8mm, ML±3.0mm, DV-4.5mm（相對于顱骨表面）。鉆孔過程中使用低速鉆頭配合生理鹽水冷卻降溫，避免熱損傷周圍組織。暴露硬腦膜后勿強行剝離，可用細小彎鑷輕柔分開以減少出血風險。

　　3.緩速插入策略

　　手持顯微操作臂以約1mm/s的速度勻速下插探針，遇到阻力時立即暫停并回退少許重新調整角度。切忌暴力推進造成機械性創傷！當探針尖*抵達預定深度后，用牙科水泥或專用夾持器穩固于顱骨螺絲上，防止因頭部移動導致的微位移。此時可通過顯微鏡確認膜區全浸沒于目標腦區。

　　三、大小鼠微透析探針灌流平衡期管理

　　1.基線穩定化流程

　　啟動恒流泵后先以較高流速沖洗系統30分鐘，排除空氣泡和雜質顆粒。隨后降至實驗設定流速繼續灌流90-120分鐘，直至基線信號波動小于5%。在此期間定期采集空白樣本檢測背景噪音水平，必要時延長平衡時間直至信號平穩。注意避免頻繁開關泵影響流體動力學穩定性。

　　2.實時監控要點

　　密切關注入口壓力變化曲線，突然升高可能提示探針堵塞；持續下降則暗示漏液發生。同步記錄動物生命體征參數（心率、血氧飽和度），確保生理狀態穩定。若使用多通道系統，不同顏色的染料可幫助區分各通路是否正常工作。